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    维生素D3对实验性自身免疫性甲状腺炎大鼠氧化应激的保护作用研究

    时间:2023-06-29 21:10:01 来源:雅意学习网 本文已影响 雅意学习网手机站

    余跃 杨涛涛 俞璐

    自身免疫性甲状腺炎又称桥本甲状腺炎(Hashimoto thyroiditis,HT),是一种器官特异性自身免疫性疾病,是最常见的甲状腺疾病之一。目前尚无有效措施能延缓这种甲状腺炎症的发展[1-2]。HT 的发病机制主要涉及细胞和体液免疫,但导致甲状腺组织破坏的病理机制仍未阐明[3-4]。近年来研究表明,氧化应激导致的甲状腺组织损伤、细胞凋亡等在HT 发病过程中扮演关键角色[5-6]。研究发现,实验性自身免疫性甲状腺炎(experimental autoimmune thyroiditis,EAT)模型大鼠体内存在明显的氧化应激紊乱[7]。因此,使用适宜抗氧化制剂可能是HT 治疗的一个新思路。诸多研究证实,维生素D 除了具有调节钙磷及骨代谢等作用外,还具有抗氧化应激、免疫调节、抗炎、抗肿瘤等多种医疗价值[8-9],如通过减少活性氧、增加抗氧化能力来减轻糖尿病肾病、酒精性肝损伤、脑缺血再灌注损伤等疾病中的氧化应激反应,从而发挥组织保护作用[10-12]。目前关于HT 患者体内缺乏维生素D 的报道逐渐增多,提示维生素D 可能参与了HT 的发生、发展,补充维生素D 或有助于HT 相关症状的缓解[13-15],但是维生素D 治疗和改善HT 的作用机制还未见报道。本研究构建EAT 大鼠模型并予维生素D3药物干预,观察甲状腺组织烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(nicotinamide adenine dinucleotide phosphate,NADPH)氧化酶亚基p22phox、gp91phoxmRNA 和蛋白表达的变化,血清超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、谷胱甘肽过氧化物酶(glutathion peroxidase,GSH-Px)活性及丙二醛(malondialdehyde,MDA)水平的变化,来探究维生素D3对HT 患者氧化应激的保护作用机制。

    1.1 材料

    1.1.1 实验动物 SPF 级SD 大鼠30 只,体质量(200±10)g,雌雄各半,购于上海斯莱克实验动物有限公司,饲养及实验均在宁波大学实验动物中心(SYXK[浙]2019-0005)进行。实验方案通过宁波大学实验动物伦理委员会伦理审查。

    1.1.2 主要试剂 维生素D3粉剂(纯度98%)购自上海麦克林生化科技股份有限公司,批号:C12700602;
    猪甲状腺球蛋白(porcine thyroglobulin,PTg)购自北京酷尔化学科技有限公司,批号:20211223;
    不完全弗氏佐剂(incomplete Freund"s adjuvant,IFA)和完全弗氏佐剂(complete Freund"s adjuvant,CFA)购自美国Sigma 公司,批号分别为SLCB8702、SLBW7430;
    甲状腺过氧化物酶抗体(thyroid peroxidase antibody,TPOAb)和甲状腺球蛋白抗体(thyroid globulin antibody,TgAb)ELISA试剂盒购自美国Thermo 公司,批号分别为EHTPO、EHTG;
    SOD、GSH-Px 和MDA 测定试剂盒购自南京建成生物工程研究所有限公司,批号分别为20220507、20220506、20211214;
    甘油醛-3-磷酸脱氢酶(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,GAPDH)抗体购自美国Proteintech 公司,批号:10494-1-AP;
    anti-p22phox抗体购自美国GeneTex 公司,批号:GTX133970;
    antigp91phox抗体购自英国Abcam公司,批号:ab129068;
    Trizol 购自美国Invitrogen 公司,批号:235005;
    辣根过氧化物酶(horseradish peroxidase,HRP)标记的山羊抗兔抗体和二喹啉甲酸(bicinchoninicacid,BCA)蛋白浓度测定试剂盒购自上海碧云天生物技术有限公司,批号分别为A0208、P0010;
    聚偏二氟乙烯(polyvinylidene fluoride,PVDF)转印膜购自美国Millipore 公司,批号:R9NA96863。

    1.2 方法

    1.2.1 实验动物分组和处理 大鼠适应性喂养1 周,随机分为5 组,每组6 只。正常对照组不作处理,其余4 组参照张杰等[7]方法造模。取0.05 ml PTg 溶液(2 g/L)与CFA 按体积比1∶1 混合,乳化成油包水乳剂;
    取100 μg 乳化的PTg 多点皮下注射大鼠,作为初次免疫,第2 周起每周再取0.05 ml 注射,作为加强免疫,共加强免疫4 次。造模完成后24 h,正常对照组和模型对照组均给予蒸馏水10 ml/(kg·d)灌胃,维生素D3高剂量(200 μg/L)组、维生素D3低剂量(20 μg/L)组给予10 ml/(kg·d)维生素D3灌胃,共给药5 周。维生素D3预防(200 μg/L)组自造模开始即给予10 ml/(kg·d)维生素D3灌胃,共给药9周。

    1.2.2 大鼠血清指标检测 末次给药6 h 后,所有大鼠麻醉后心脏取血6 ml,3 000 r/min 离心10 min,取上层血清。采用ELISA 法,按试剂盒说明书测定血清TPOAb、TgAb 水平;
    采用羟胺法测定血清SOD 活性,采用比色法测定血清GSH-Px 活性,采用硫代巴比妥酸法测定血清MDA 水平。

    1.2.3 大鼠甲状腺组织p22phox、gp91phoxmRNA 表达的检测 采用qRT-PCR 法。大鼠取血后颈椎脱臼处死,解剖并迅速取出双侧甲状腺,pH 7.4 PBS 研磨制备组织匀浆液,按试剂盒说明书方法提取各组大鼠甲状腺组织总RNA 并合成cDNA,采用qRT-PCR 法检测,根据2-ΔΔCt法计算mRNA 的表达水平。引物序列见表1。

    表1 引物序列

    1.2.4 大鼠甲状腺组织p22phox、gp91phox蛋白表达的检测 采用Western blot 法。取大鼠部分甲状腺组织,加入RIPA 裂解液匀浆,提取总蛋白,SDS-PAGE 电泳,转PVDF 膜后分别加anti-p22phox抗体和anti-gp91phox抗体,4 ℃孵育过夜,TBST 漂洗3 次,加入HRP 标记二抗,室温1 h,ECL 显影、曝光,使用ImageJ 软件进行蛋白质灰度分析,以GAPDH 为参照,计算p22phox、gp91phox蛋白相对表达量。

    1.3 统计学处理 采用SPSS 17.0 统计软件。计量资料以表示,多组间比较采用单因素方差分析,两两比较采用LSD t 法。P<0.05 为差异有统计学意义。

    2.1 5 组大鼠血清TgAb 和TPOAb 水平比较 相比正常对照组,模型对照组TgAb 和TPOAb 水平均显著升高(均P<0.05)。相比模型对照组,维生素D3低剂量组TgAb 水平显著降低,差异有统计学意义(P<0.05),TPOAb 也降低,但差异无统计学意义(P>0.05)。相比模型对照组和维生素D3低剂量组,维生素D3高剂量组及预防组TgAb、TPOAb 水平均显著降低,差异均有统计学意义(均P<0.05)。相比维生素D3高剂量组,维生素D3预防组TgAb 水平显著降低,差异有统计学意义(P<0.05),见表2。

    表2 5 组大鼠血清TgAb、TPOAb 水平比较(IU/ml)

    2.2 5 组大鼠血清SOD、GSH-Px 活性和MDA 水平比较 相比正常对照组,模型对照组SOD、GSH-Px 活性均显著降低,MDA 水平显著升高(均P<0.05)。相比模型对照组,维生素D3低剂量组、高剂量组和维生素D3预防组SOD、GSH-Px 活性均显著升高,MDA 水平均显著降低(均P<0.05)。与维生素D3低剂量组比,维生素D3高剂量组SOD、GSH-Px 活性上升,MDA 水平下降,但差异均无统计学意义(均P>0.05);
    维生素D3预防组SOD 活性显著升高(P<0.05),GSH-Px 活性和MDA 水平比较,差异无统计学意义(均P>0.05),见表3。

    表3 5 组大鼠血清SOD、GSH-Px 活性和MDA 水平比较

    2.3 5组大鼠甲状腺组织中p22phox和gp91phoxmRNA 水平比较 相比正常对照组,模型对照组p22phox和gp91phoxmRNA水平均显著升高(均P<0.05)。相比模型对照组,维生素D3低剂量组、高剂量组和维生素D3预防组p22phox和gp91phoxmRNA 水平均显著降低(均P<0.05)。相比维生素D3低剂量组,维生素D3高剂量组和预防组p22phox-mRNA 水平均显著降低(均P<0.05),gp91phoxmRNA 水平下降,但差异均无统计学意义(均P>0.05),见表4。

    表4 5 组大鼠甲状腺组织p22phox、gp91phox mRNA 水平比较

    2.4 5 组大鼠甲状腺组织中p22phox和gp91phox蛋白相对表达量比较 相比正常对照组,模型对照组p22phox、gp91phox蛋白相对表达量均显著升高(均P<0.05)。相比模型对照组,维生素D3低剂量组gp91phox蛋白相对表达量显著降低(P<0.05),p22phox蛋白相对表达量降低但差异无统计学意义;
    维生素D3高剂量组和维生素D3预防组p22phox、gp91phox蛋白相对表达量均显著降低(均P<0.05)。相比维生素D3低剂量组,维生素D3高剂量组和维生素D3预防组p22phox、gp91phox蛋白相对表达量比较,差异均无统计学意义(均P>0.05),见图1。

    图1 5 组大鼠甲状腺组织中p22phox、gp91phox蛋白相对表达量比较(A:蛋白相对表达量;
    B:蛋白电泳图)

    TgAb 和TPOAb 作为甲状腺自身抗体,在HT 发病和病程进展中具有重要作用,HT 的特征表现为高滴度的TgAb 和TPOAb。李心爱等[16]综述了维生素D 与HT的关系后发现,HT 自身抗体上调可能是维生素D 水平的下降导致,提示补充维生素D 或许可降低TgAb、TPOAb 滴度。刘思琪等[17]通过Meta 分析研究了HT 患者补充维生素D 治疗后甲状腺自身抗体水平的变化,结果发现维生素D 补充治疗6 个月,HT 患者TgAb、TPOAb 水平显著下降。本研究发现EAT 大鼠TgAb 和TPOAb 水平均显著升高,经维生素D3干预后TgAb 和TPOAb 水平均显著降低,且高剂量维生素D3效果优于低剂量、提前预防给药效果优于正常给药,可见维生素D3能通过降低HT 自身抗体滴度来减少对甲状腺组织的破坏,延缓病程进展。

    NADPH 氧化酶(NADPH oxidase,NOX)家族中,同源物NOX1-5和双氧化酶1-2(dual oxidase1-2,DUOX1-2),拥有共同的亚基p22phox和gp91phox,是体内活性氧的主要来源[18]。研究表明NADPH 氧化酶活性升高会产生过多活性氧,可引发氧化应激损伤并导致人体多种疾病的发生、发展[19-21]。因此,抑制NADPH 氧化酶的过度激活有望成为治疗多种疾病的潜在作用靶点。徐申[22]在细菌内毒素所致急性肾损伤的研究中发现,模型小鼠肾脏NADPH 氧化酶亚基gp91phox和p47phox明显上调,维生素D3预处理能明显抑制这种上调,并减轻细菌内毒素引起的肾脏氧化应激损伤。Cui 等[23]对外伤脑损伤大鼠模型给予维生素D 类似物骨化三醇治疗,结果发现大鼠海马组织NOX2活性降低,从而减少了NOX2依赖的NADPH 氧化酶活性,减轻了大脑神经元的损伤。本研究中EAT 模型大鼠甲状腺组织中NADPH 氧化酶亚基p22phox和gp91phoxmRNA 水平和蛋白相对表达量明显增加,经维生素D3干预后,两者表达明显受到抑制,减轻过度氧化对甲状腺组织的损伤。提示维生素D3对HT 的治疗作用机制可能是通过下调NADPH氧化酶的活性而实现。

    氧化应激紊乱除会产生过量活性氧外,还与抗氧化酶活性降低、脂质过氧化程度增加及抗氧化能力的减弱密切相关。Wang 等[24]构建了急性肝损伤和维生素D 缺乏型急性肝损伤大鼠模型,比较两种模型的抗氧化酶水平发现,维生素D 缺乏组大鼠SOD 和GSHPx 活性明显降低、MDA 水平显著升高,导致该组大鼠肝酶显著升高、肝组织坏死明显,表明维生素D 缺乏加重了急性肝损伤的氧化应激反应。刘军等[25]对瘦素受体基因纯合突变(leprdb/db,db/db)小鼠进行了有氧运动治疗、维生素D 治疗及有氧运动联合维生素D 干预治疗,观察不同组小鼠肝脏抗氧化活性变化,结果发现,相比对照组,各干预组SOD 和GSH-Px 活性均显著升高,MDA 水平均显著降低,表明运动或/和维生素D 干预能通过提高肝脏抗氧化酶活性,从而降低肝细胞的氧化应激作用。本研究发现EAT 大鼠模型抗氧化能力明显下降,SOD 和GSH-Px 活性降低,MDA 水平升高;
    给予维生素D3治疗和预防均能明显提高抗氧化酶的活性,相比低剂量组,预防组SOD 活性明显升高,提示维生素D3能通过增强抗氧化水平来纠正HT 的氧化应激紊乱,从而发挥对甲状腺应激损伤的保护作用。

    综上所述,EAT 大鼠存在自身抗体水平升高和明显的氧化应激紊乱,补充维生素D3能显著降低TgAb 和TPOAb 水平,减轻氧化应激损伤,包括下调NADPH 氧化酶亚基p22phox、gp91phoxmRNA 水平和蛋白相对表达量,减少活性氧产生,提高SOD、GSH-Px活性,降低MDA 水平,增加抗氧化能力,从而减少对甲状腺组织的破坏和损伤,延缓自身免疫性甲状腺炎疾病的进展。补充维生素D3可为预防和治疗HT提供新的思路和方法。

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